岡崎片段，相對比較短的脫氧核糖核酸鏈（大約1000核苷酸殘基），是在DNA的后隨鏈的不連續合成期間生成的片段，這是Reiji Okazaki在DNA合成實驗中添加放射性的脫氧核酸前體觀察到的。
歷史沿革
DNA復制過程中，2條新生鏈都只能從5'端向3'端延伸，前導鏈連續合成,滯后鏈分段合成，這些分段合成的新生DNA片段稱岡崎片段，細菌岡崎片段長度1000-2000核苷酸殘基，真核生物岡崎片段長度100-200核苷酸殘基.在連續合成的前導鏈中，U-糖苷酶和AP內切酶也會在錯配堿基U處切斷前導鏈，任何一種脫氧核糖核酸聚合酶合成方向都是從5'向3'方向延伸，而DNA模板鏈是反向平行的雙鏈，這樣在一條鏈上，DNA合成方向和復制移動方向相同（前導鏈），而在另一條模板上卻是相反的（后滯鏈）。那么在復制叉中新鏈是如何合成的呢？1968年岡崎（Okazaki）及其同事進行了一系列實驗，回答了這一問題。岡崎片段名稱就是源自最早發現團隊的領導者，也就是岡崎令治與岡崎恒子（一對夫妻）的姓氏。其團隊是在研究大腸桿菌中的噬菌體脫氧核糖核酸復制情形時發現此現象。
一組短的DNA片段，是在DNA復制的起始階段產生的，隨后又被連接酶連接形成較長的片段。在大腸桿菌生長期間，將細胞短時間地暴露在標記的胸腺嘧啶中，就可證明岡崎片段的存在。岡崎片段的發現為DNA復制的羅杰·科恩伯格機理提供了依據。
試驗檢測
兩組實驗，一組是脈沖標記實驗（pulse-labeling experiment）。以E.coli為材料，在培養時，培養基中加入同位素[3H]標記的dTTP前體(Thymidine)，經30秒后，脫氧核糖核酸剛開始復制，分離DNA，然后在堿中沉淀，變性，讓新合成的單鏈和模板鏈分開，再用CsCl密度梯度離心，以沉降的快慢來確定片段的大小，再檢測放射標記，結果表明被3H標記的片段，也就是新合成的片段，沉淀系數為20S左右，即都是長1000~2000Nt的DNA片段，而親本鏈要比它大20~50倍；第二組實驗是脈沖追逐實驗。目的是檢測早期合成的DNA片段以后的命運又是如何的？是依然如舊的短片段，還是連接成了長片段。這個實驗是先進行標記培養30秒，以后除去同位素繼續培養幾分鐘，再分離脫氧核糖核酸在堿中沉淀，檢測結果。先合成的（帶標記）的DNA不再是短片段，而和總DNA的情況相似，沉淀系數為70S~120S較長的片段，這意味著剛開始合成的片段都是短片段，以后再連接成長片段，人們就把最初合成的短片段稱為岡崎片段（Okazaki fragment）。由于這個實驗的結果使得人們普遍認為：無論是前導鏈還是后滯鏈都是先合成小片段，然后在連成大片段，稱為“不連續復制“（discontinuous replication）。然而由模型預測應該只有一半放射標記存在于小片段中，但實驗的結果卻全部是小片段脫氧核糖核酸，為什么從前導鏈模板的3′-OH端延伸會不連續合成呢？人們在思考這個問題。1978年Olivera提出了半不連續（semidiscontinuous）復制模型，也就是說前導鏈上的合成是連續的，只有后滯鏈上的合成才是半連續的。已經弄清原來是由于細胞內都存在有dTTP和dUTP，而DNApolⅢ卻并不能區分它們，因此也會將dUTP加入到DNA中，形成A·U對。那么在DNA中為什么沒有U的存在呢？這是因為E.coli細胞里有雙重“保險”，防止了U的“混入”。第一道關是細胞里的dUTPase，它能使dUTP變成dUMP，dUMP是不能作為脫氧核糖核酸合成的底物，這樣它就不再能加入DNA中。但總還有些漏網之“魚”，它們還是逃過此關，混入DNA中，這就靠第二道關來清除“異己”，這道關的主角是尿N-糖苷酶（uracilN-glycosylase），它可以切斷混合尿苷的糖苷，形成無Pu和Py位點（apurinicora pyrimidinic，AP），再由AP內切酶在AP位點切出一個缺口，進一步進行切除修復。在細胞內尿嘧啶N-糖苷酶作用較快，而AP酶作用較慢，在新鏈合成之初約1200bp就有可能摻進一個U，但很快就被尿嘧啶N-糖苷酶切斷糖苷鍵，在AP酶未作用前在脈沖標記實驗中就提取了，用氫氧化鈉沉淀時，AP位點十分易斷裂，所以前導鏈也成了小片段。以下實驗證實了這個解釋：
(1)在dut-突變體（dUTPase缺失）中岡崎片段比在dut+中為短。這是因為U摻入機會增加；(2)在ung-（尿嘧啶N-糖苷酶缺失）突變體中，新合成的脫氧核糖核酸約有一半由片段組成。(3)因為尿嘧啶N-糖苷酶缺失，不會切除U的糖苷鏈，也就不會出現AP位點，所以堿沉淀時不易斷裂，從而保持了半不連續的原貌。
在dut-,ung-雙突變體中，結果和實驗（2）相同，更進一步證實了此推測。真核生物岡崎片段的成熟機制比較復雜，由Polδ、RNaseHI、FEN1、Dna2和DNA連接酶等多種蛋白質協同通過兩種機制加工完成。Polδ的3′→5′核酸外切酶活性能替代FEN1，在岡崎片段成熟中通過阻止過量的脫氧核糖核酸鏈替代合成，保證產生能被DNA連接酶連接的具有單一切口兩個DNA片段，有利于保持基因組的穩定性。
DNA雙鏈
在DNA雙鏈進行半保留復制時，在復制點附近新合成的與親代DNA鏈互補的DNA片段。是岡崎令治等（1966）首先發現的。在大腸桿菌約為1千-2千核苷酸的長度。DNA聚合酶只使脫氧核糖核苷酸在5′→3′的方向重合。而半保留復制在5′→3′方向重合的同時，在3′→5′方向的重合也是不可缺少的。此矛盾由岡崎片段的發現，以及在其基礎上的不連續復制模式而解釋了。在復制點，如圖所示，首先由脫氧核糖核酸聚合酶的作用，在5′→3′方向與親代DNA分子雙方的鏈互補，由脫氧核苷酸配對重合，形成短的DNA片段，它們再由DNA連接酶的作用而結合起來形成長的DNA分子，并逐漸復制成為DNA雙鏈。
遺傳信息
DNA是遺傳信息的載體，故親代DNA必須以自身分子為模板準確的復制成兩個拷貝，并分配到兩個子細胞中去，完成其遺傳信息載體的使命。而DNA的雙鏈結構對于維持這類遺傳物質的穩定性和復制的準確性都是極為重要的。
脫氧核糖核酸的半保留復制
Waston和Click在提出DNA雙螺旋結構模型時曾就DNA復制過程進行過研究，他們推測，DNA在復制過程中堿基間的氫鍵首先斷裂，雙螺旋解旋分開，每條鏈分別作模板合成新鏈，每個子代DNA的一條鏈來自親代，另一條則是新合成的，故稱之為半保留式復制(semiconservativereplication)。
1958年Meselson和Stahl進行了如圖8-3-5的實驗證明了DNA分子是以半保留方式進行自我復制的。
脫氧核糖核酸復制的起始，方向和速度
DNA在復制時，雙鏈DNA解旋成兩股分別進行。其復制過程的復制起點呈現叉子的形式，故稱復制叉。以復制叉向前移動的方向為標準，一條模板鏈為3’—〉5’走向，在其上DNA能以5’—〉3’方向連續合成，稱為前導鏈(leadingstrand)；另一條模板鏈為5’—〉3’走向，在其上DNA也是5’—〉3’方向合成，但與復制叉移動的方向正好相反，故隨著復制叉的移動形成許多不連續的岡崎片段，最后在連成一條完整的DNA鏈，該鏈稱為后隨鏈(laggingstrand)。實驗證明脫氧核糖核酸的復制是由一個固定的起始點開始的。一般把生物體的單個復制單位稱為復制子。一個復制子只含一個復制起點。一般說，細菌，病毒及線粒體DNA分子均作為單個復制子完成其復制，真核生物基因組可以同時在多個復制起點上進行雙向復制，即它們的基因組包括多個復制子。多方面的實驗結果表明，大多數生物內DNA的復制都是從固定的起始點以雙向等速方式進行的。復制叉以DNA分子上某一特定順序為起始點，向兩個方向等速生長前進。
脫氧核糖核酸復制過程
1．DNA雙螺旋的解旋
DNA在復制時，其雙鏈首先解開，形成復制叉，而復制叉的形成則是由多種蛋白質及酶參與的較復雜的復制過程
（1）單鏈DNA結合蛋白（single—strandedDNAbindingprotein,ssbDNA蛋白）ssbDNA蛋白是較牢固的結合在單鏈DNA上的蛋白質。原核生物ssbDNA蛋白與DNA結合時表現出協同效應：若第1個ssbDNA蛋白結合到DNA上去能力為1，第2個的結合能力可高達103；真核生物細胞中的ssbDNA蛋白與單鏈DNA結合時則不表現上述效應。ssbDNA蛋白的作用是保證解旋酶解開的單鏈在復制完成前能保持單鏈結構，它以四聚體的形式存在于復制叉處，待單鏈復制后才脫下來，重新循環。所以，ssbDNA蛋白只保持單鏈的存在，不起解旋作用。
（2）脫氧核糖核酸解鏈酶（DNAhelicase）
DNA解鏈酶能通過水解atp獲得能量以解開雙鏈DNA。這種解鏈酶分解ATP的活性依賴于單鏈DNA的存在。如果雙鏈DNA中有單鏈末端或切口，則DNA解鏈酶可以首先結合在這一部分，然后逐步向雙鏈方向移動。復制時，大部分DNA解旋酶可沿滯后模板的5’—〉3’方向并隨著復制叉的前進而移動，只有個別解旋酶（Rep蛋白）是沿著3’—〉5’方向移動的。故推測Rep蛋白和特定脫氧核糖核酸解鏈酶是分別在DNA的兩條母鏈上協同作用以解開雙鏈DNA。
（3）DNA解鏈過程
DNA在復制前不僅是雙螺旋而且處于超螺旋狀態，而超螺旋狀態的存在是解鏈前的必須結構狀態，參與解鏈的除解鏈酶外還有一些特定蛋白質，如大腸桿菌中的Dna蛋白等。一旦DNA局部雙鏈解開，就必須有ssbDNA蛋白以穩定解開的單鏈，保證此局部不會恢復成雙鏈。兩條單鏈DNA復制的引發過程有所差異，但是不論是前導鏈還是后隨鏈，都需要一段核糖核酸引物用于開始子鏈DNA的合成。因此前導鏈與后隨鏈的差別在于前者從復制起始點開始按5’—3’持續的合成下去，不形成岡崎片段，后者則隨著復制叉的出現，不斷合成長約2—3kb的岡崎片段。
2．岡崎片段與半不連續復制
因脫氧核糖核酸的兩條鏈是反向平行的，故在復制叉附近解開的DNA鏈，一條是5’—〉3’方向，另一條是3’—〉5’方向，兩個模板極性不同。所有已知DNA聚合酶合成方向均是5’—〉3’方向，不是3’—〉5’方向，因而無法解釋DNA的兩條鏈同時進行復制的問題。為解釋DNA兩條鏈各自模板合成子鏈等速復制現象，日本學者岡崎市（Okazaki）等人提出了DNA的半連續復制（semidiscontinuousreplication）模型。1968年岡崎用3H脫氧胸苷短時間標記大腸桿菌，提取脫氧核糖核酸，變性后用超離心方法得到了許多3H標記的，被后人稱作岡崎片段的DNA。延長標記時間后，岡崎片段可轉變為成熟DNA鏈，因此這些片段必然是復制過程中的中間產物。另一個實驗也證明DNA復制過程中首先合成較小的片段，即用DNA連接酶溫度敏感突變株進行試驗，在連接酶不起作用的溫度下，便有大量小DNA片段積累，表明DNA復制過程中至少有一條鏈首先合成較短的片段，然后再由連接酶鏈成大分子DNA。一般說，原核生物的岡崎片段比真核生物的長。深入研究還證明，前導鏈的連續復制和滯后鏈的不連續復制在生物界具有普遍性，故稱為脫氧核糖核酸雙螺旋的半不連續復制。
3．復制的引發和終止
所有的DNA的復制都是從一個固定的起始點開始的，而DNA聚合酶只能延長已存在的DNA鏈，不能從頭合成DNA鏈，新DNA的復制是如何形成的？經大量實驗研究證明，DNA復制時，往往先由核糖核酸聚合酶在DNA模板上合成一段RNA引物，再由聚合酶從RNA引物3’端開始合成新的DNA鏈。對于前導鏈來說，這一引發過程比較簡單，只要有一段RNA引物，DNA聚合酶就能以此為起點，一直合成下去。對于后隨鏈，引發過程較為復雜，需要多種蛋白質和酶參與。后隨鏈的引發過程由引發體來完成。引發體由6種蛋白質構成，預引體或引體前體把這6種蛋白質結合在一起并和引發酶或引物過程酶進一步組裝形成引發體。引發體似火車頭一樣在后隨鏈分叉的方向前進，并在模板上斷斷續續的引發生成滯后鏈的引物RNA短鏈，再由脫氧核糖核酸聚合酶III作用合成DNA，直至遇到下一個引物或岡崎片段為止。由核糖核酸酶H降解RNA引物并由DNA聚合酶I將缺口補齊，再由DNA連接酶將每兩個岡崎片段連在一起形成大分子DNA.。
端粒和端粒酶
1941年美籍印度人芭芭拉·麥克林托克（McClintock）就提出了端粒(telomere)的假說，認為染色體末端必然存在一種特殊結構——端粒已知染色體端粒的作用至少有二：①保護染色體末端免受損傷，使染色體保持穩定；②與核纖層相連，使染色體得以定位。
在弄清楚脫氧核糖核酸復制過程之后，20世紀70年代科學家對DNA復制時新鏈5’端的核糖核酸引物被切除后，空缺是如何被填補的提出了質疑。如不填補豈不是DNA每復制一次就短一點。以后隨鏈復制為例，當RNA引物被切除后，岡崎片段之間是由DNA聚合酶I催化合成的DNA填補之，然后再由DNA連接酶將它們連接成一條完整的鏈。但是DNA聚合酶I催化合成DNA時，需要自由3’—OH作為引物，最后余下子鏈的5’無法填補，于是染色體就短了一點。在正常體細胞中普遍存在著染色體每復制一次端粒就短一次的現象。人們推測，可能一旦端粒縮短到某一閾限長度以下時，它們就會發出一個警報，指令細胞進入衰老；或許是當細胞判斷出它們的染色體已變得太短了，于是分裂也就停止了，造成正常體細胞壽命有一定界限。但是在癌細胞中染色體端粒卻一直維持在一定長度上，這是為什么？這是因為脫氧核糖核酸復制后，把染色體末端短缺部分補上需要端粒酶，這是一種含有核糖核酸的酶，它既解決了模板，又解決了引物的問題。在生殖細胞和85%癌細胞中都測出了端粒酶具有活性，但是在正常體細胞中卻無活性，20世紀90年代中期，Blackburn首次在原生動物中克隆出端粒酶基因。
端粒酶在癌細胞中具有活性，它不僅使癌細胞可以不斷分裂增生，而且它為癌變前的細胞或已經是癌性的細胞提供了時間，以積累附加的突變，即等于增加它們復制，侵入和最終轉移的能力。同時人們也由此萌生了開發以端粒為靶的藥物，即通過抑制癌細胞中端粒酶活性而達到治療癌癥的目的。
至于真核生物脫氧核糖核酸末端的結構特點，早就在1978年Blackburn就以原生動物四膜蟲（一種纖毛門）為例說明之：①迥紋形式的發夾環；②僅由C,A組成的簡單序列大量重復（C4A2）20~70；③鏈上有許多缺口（nicks）。
參考資料 >